Когда нужна центрифуга для отделения плазмы крови: hard и light spin
Центрифуга для отделения плазмы крови: hard spin и light spin
В валидации top-and-bottom набора для сбора крови (Oslo blood bank, n=40) центрифуга для отделения плазмы крови шла по цепочке: overnight на охлаждающей пластине Compocool при комнатной температуре → hard spin 14/13 мин при 22 °C и 4232/4583 G на Cryofuge 6000i или Cryofuge 16 (Heraeus) → медленное торможение → разделение на компоненты → плазму перенесли in-line на MacoPress Smart. Работа оценивала DINCH/PVC-набор с in-line лейкофильтром для заготовки RBC, тромбоцитов и плазмы, а не сравнение hard и soft spin.
Для оценки хранения тромбоцитов buffy coat получали из 20 пакетов DINCH/PVC рутинным методом банка крови и обрабатывали в TACSI (Terumo BCT). Численных параметров второго (light) спина для PRP-пути в тексте S1 нет — для soft/light опираемся на примеры обзора S2.
После обработки компоненты хранили по рутинным режимам банка: тромбоциты — комнатная температура с постоянным перемешиванием 7 суток; RBC — 2–6 °C, 49 суток; плазму замораживали и держали при −40 °C 12 месяцев. Это температуры хранения после разделения, не режим ротора light spin. Температура hard spin в S1 зафиксирована как 22 °C.
Нужен подбор рефрижераторной напольной центрифуги под пакеты — смотрите CDL7M или блок в конце статьи.
Как центрифугирование разделяет компоненты крови по плотности
Цельная кровь — смесь клеточных элементов, коллоидов и кристаллоидов. Компоненты с разной относительной плотностью, скоростью оседания и размером расходятся под центробежной силой. В службе крови центрифуга для разделения крови — не «быстрый осадок», а управляемое расслоение по удельному весу.
По возрастанию specific gravity слои выстраиваются так: плазма → тромбоциты → лейкоциты (buffy coat) → эритроцитарная масса (PRBC). Функциональная пригодность каждой фракции зависит от правильной обработки и хранения, а не только от факта спина.
RCF, время и температура задают, где окажется граница плазмы и клеточного слоя. Сами по себе они не гарантируют выход и качество — их задаёт весь контур: пакет, пресс, фильтр, путь заготовки тромбоцитов.
Heavy spin и light spin: одношаговая и двухступенчатая заготовка компонентов
Если нужны только PRBC и свежезамороженная плазма (FFP), достаточно одношагового heavy spin. Если вместе с PRBC и FFP нужны тромбоцитарные концентраты (PLTC), обзорные схемы требуют двухступенчатого центрифугирования — метод PRP или buffy coat. Центрифуга для плазмы крови в этой схеме обслуживает заготовку из пакетов цельной крови.
Типовая программа рефрижераторной центрифуги для службы крови в том же обзоре описывается двумя спинами. Heavy spin — пример 5000 G, 10–15 мин; light spin — пример 1500 G, 5–7 мин. Здесь «G» — относительная центробежная сила (RCF), которую считают из оборотов в минуту и длины ротора. Одинаковый «heavy» на двух станциях может отличаться по об/мин при разном радиусе.
RCF растёт с квадратом частоты вращения и с радиусом ротора. Без фиксированного коэффициента из источника числовую константу не подставляем — важен сам принцип: heavy и light задают не «магические G», а пару RCF–время под конкретный ротор.
RCF (G) = f(об/мин, длина ротора)
| Тип спина | RCF (G), пример | Время, пример | Что получают / когда применяют |
|---|---|---|---|
| Heavy spin | e.g. 5000 G | e.g. 10–15 мин | PRBC + FFP одним шагом |
| Light spin | e.g. 1500 G | e.g. 5–7 мин | Второй шаг для PLTC (PRP или buffy coat) |
Примеры «e.g.» из обзора S2.
Это не то же самое, что дифференциальное центрифугирование по ступеням RCF для клеточных фракций: там нарастающие спины дробят органеллы и клетки; здесь hard/light spin обслуживают трансфузионную заготовку плазмы и клеточных компонентов из пакетов.
Границы переноса выводов
S1 — валидация набора и фильтра (DINCH vs DEHP), а не сравнение hard и soft spin: soft/light в исследовании не измеряли. Цифры 4232/4583 G, 14/13 мин, 22 °C и модели Cryofuge относятся только к протоколу Oslo (n=40, top-and-bottom). Их нельзя переносить на другую модель центрифуги как «заводской hard spin».
Примеры 5000 G / 1500 G — обобщённые e.g. обзора (Индия, 2014); авторы прямо пишут, что heavy/light зависят от производителя и модели. Режимы хранения 7 / 49 суток и −40 °C — после разделения, не параметры спина.
Для других задач того же класса напольных центрифуг большого объёма фокус иной: в материале про центрифугирование большого объёма речь об агрегации экстраклеточных везикул, не о заготовке трансфузионных компонентов.
Рефрижераторная центрифуга для службы крови: выбор режима и CDL7M
Для заготовки компонентов из пакетов цельной крови нужна рефрижераторная центрифуга для службы крови с контролем температуры и RCF и вместимостью под пакеты. В работе банка это центрифуга для службы крови рефрижераторная напольная / центрифуга напольная с охлаждением — не настольный прибор под пробирки.
Класс такого оборудования иллюстрирует напольная центрифуга большого объёма с охлаждением CDL7M: до 12×500 мл пакетов для крови (макс. вместимость 6×2400 мл), температурный диапазон −20…40 °C при погрешности ±1 °C, максимальное ускорение 11 650 ×g (до 7000 об/мин), преобразование об/мин в RCF, таймер до 9 ч 59 мин, 10 режимов ускорения/замедления. По карточке — применение на станциях переливания крови, фармацевтических предприятиях и в лабораториях. Другой контекст — высокоскоростное центрифугирование с охлаждением для клеточных проб: там фракции клеток на другом классе приборов, здесь — пакеты крови и трансфузионные протоколы.
Если службе или банку крови нужна центрифуга для отделения плазмы и компонентов из пакетов цельной крови — напишите: Александра, технический специалист по подбору лабораторного оборудования, поможет подобрать конфигурацию CDL7M под вашу задачу. Параметры hard/light spin из публикаций относятся к протоколам авторов и обзору, не к заводским программам прибора.
Тел.: 8 (499) 490-02-72
Email: blog@assa-group.ru
- S1: An evaluation of diethylhexyl phthalate free top & bottom in-line blood collection set — https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC11833214/
- S2: Overview of blood components and their preparation — https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4260297/
